Напишите нам

Поиск по сайту

Долгое время химическая структура антигенов Rh оставалась загадкой. Многочисленные попытки выделить этот антиген в чистом виде и проверить его серологические свойства резус-антителами были безуспешными. Высказывалось суждение о том, что этот антиген в серологически активном виде не может суще­ствовать вне клеточной мембраны и, будучи выделенным из нее, тотчас инакти-вируется. Такое мнение поддерживалось сведениями о том, что нагревание и вы­сушивание эритроцитов снижают серологическую активность антигенов Rh.

Разработка адекватных методов исследования гидрофобных структур мем­браны эритроцитов дала существенный сдвиг в этой области. Появились сообщения Green [316] о том, что экспрессия антигенов D и С на эритроцитах связана с тиоловыми группами, и, следовательно, эти антигены по своей при­роде относятся к белкам, а не к полисахаридам, как считали раньше по анало­гии с полисахаридами А и В.

Использование глутатионмалеимидмембранных зондов также указывало на причастность экзофациальных тиоловых групп к D-специфичности. Однако значение свободных тиоловых групп в формировании антигенов Rh было по­ставлено под сомнение Suyama и соавт. [646].

Далее было показано (Green [315]), что липидные фракции, экстрагиро­ванные из стромы эритроцитов n-бутанолом, а также получаемый при этом не­растворимый белковый осадок не обладают серологической активностью по отдельности, но при объединении этих фракций специфическая D-активность субстрата вновь проявляется. Таким образом, стала проясняться белково-липидная природа субстанции Rh.

Hughes-Jones и соавт. [366] подтвердили, что основными компонентами, не­обходимыми для экспрессии антигена D, являются фосфолипиды, поскольку обработка мембран эритроцитов фосфолипазами А2 и С инактивировала анти­гены D, Сс и Ее. Интересная деталь: как было установлено Hughes-Jones и со­авт. [366], Green и соавт. [320], анти-Э-антитела, адсорбированные на эритро­цитах D+, предотвращали инактивацию антигена D фосфолипазой А2, что ука­зывало на специфичность воздействия этого фермента именно на структуру-носитель антигена D.

Попытки выделить и идентифицировать белок Rh, предпринятые до 1980-х годов, позволили составить общую физико-химическую характеристику антиге­нов Rh. Предварительно установлено, что белок D имеет мол. массу 7-10 кДа. Другие исследователи сообщили, что антигены Rh расположены на анионном транспортном белке в полосе 3 [678]. Полоса 3, как теперь известно, соответ­ствует антигенам Diego. Впоследствии полученные результаты были объяснены излишним протеолизом полипептидов D при очистке, а также тем фактом, что оба белка одинаково гидрофобны и мигрируют вместе в процессе выделения из мембраны эритроцитов.

Прорыв в исследовании антигенов Rh произошел в начале 1980-х годов, ког­да появились методы выделения растворимых комплексов «D-aura-D» имму-нопреципитацией антигенов специфическими антителами, меченными ради­оактивным йодом (Moore и соавт. [483], Ridgwell и соавт. [564]). Вскоре были идентифицированы полипептиды с мол. массой 32-34 кДа, несущие серологи­ческую активность D, Сс и Ее, и отсутствовашие на эритроцитах Rhnu!1. Каждый полипептид содержал экзофациальные тиоловые группы [564].

Далее выяснилось, что антигены е и Е расположены на одном полипеп­тиде, а антиген D - на другом.

Картирование Rh-полипептидов, проведенное Bloy и соавт. [172], Blanchard и соавт. [168], показало, что фракции, иммунопреципитированные сыворотками анти-с и анти-Е, практически идентичны, а фракции, иммуно-преципитированные сыворотками анти-D, существенно от них отличаются.

Hughes-Jones и соавт. [363] не наблюдали конкурентного подавления связыва­ния анти-с-антител антителами анти-Е и анти-D, а также ингибиции связывания анти-Е-антител антителами анти-с и анти-D, что свидетельствовало о размещении антигенов D, с и Е на разных участках полипептидов. При картировании установ­лено, что полипептид D имеет отличительные участки, не характерные для поли­пептидов с и Е, и это полностью совпало с результатами иммунопреципитации.

Gahmberg [295] отметил, что полипептид D не содержит углеводов в отли­чие от других белков, расположенных на внеклеточной поверхности мембраны эритроцитов. Такое заключение было основано на невозможности пометить полипептид D галактозоксидазой и перийодатом, неспособностью очищенно­го полипептида связываться в лектиновых колонках, а также неэффективно­стью обработки эндо-1М-ацетилглютаминазой Н и эндо-|3-галактозидазой.

Гликозилирование как обычная составляющая синтеза мембранных элемен­тов не характерно для белка Rh. Он собирается в виде комплекса, включающе­го готовые полипептиды Rh и гликопротеины Rh, причем полипептиды Rh явля­ются продуктом одного гена, расположенного на хромосоме 1, а гликопротеины Rh - продуктом другого гена, расположенного на хромосоме 6. Точно так же со­бираются антигены системы Kell: белок Кх ковалентно связывается с гликозили-рованным гликопротеином Kell, но оба субстрата являются продуктами разных генов, один из которых расположен на аутосоме, другой (Кх - на хромосоме X.)

После того как полипептиды Rh были идентифицированы, несколько групп исследователей попытались изучить их аминокислотную последова­тельность, а также создать олигонуклеотидные зонды и выделить ДНК, ко­дирующую Rh. Наиболее эффективными оказались методы препаративной иммунопреципитации (Avent и соавт. [147], Bloy и соавт. [172] с использо­ванием мышиных и человеческих моноклональных антител. Другие иссле­дователи (Saboori и соавт. [590]) использовали для очистки белков неимму­нологические методы, в частности хроматографию в гидроксиапатите каль­ция (Saboori и соавт. [589]). Очищенные полипептиды метили радиоактив­ным йодом и расщепляли химотрипсином.

Исследования показали, что полипептид Rh, преципитированный анти-D-антителами, имел ту же N-концевую последовательность (до остатка 13), что и полипептид Rh, преципитированный мышиными моноклональными антите­лами серии R6A [147]. Однако, поскольку антитела R6A реагировали с эри­троцитами D—, следовал вывод, что антиген D находится на другом полипеп­тиде, реагирующем с анти-О-антителами, и что анти-О-антитела человека и моноклональные антитела R6A мыши определяют 2 разных, но тесно связан­ных полипептида. Исследование аминокислотной последовательности белков, выделенных хроматографией в гидроксиапатите из клеток D+ и D-, подтвер­дило их сходство

Предположение о том, что полипептиды Rh могут быть связаны в мембра­не эритроцитов с гликозилированным компонентом (гликопротеин Rh), было впервые высказано Gahmberg [295]. Далее было установлено, что гликопро­теин Rh, преципитированный анти-Б-антителами вместе с полипептидом Rh, имеет мол. массу 45-70 кДа, а полипептид Rh - 30 кДа.

Когда стало ясно, что полипептиды Rh связаны в клеточной мембране с гли-копротеинами Rh, появились высказывания, что одни антигены Rh могут быть экспрессированы на полипептиде, а другие - на гликопротеине. Не исключали и третий вариант: некоторые антигены Rh представляют собой комплекс, со­стоящий из участков полипептида и гликопротеина. Присутствуя порознь, эти участки полипептида и гликопротеина не являются иммуногенными, а когда присутствуют одновременно, их комплекс приобретает иммуногенность.

Однако в последующих работах было установлено, что белковые последо­вательности, определяющие специфичность антигенов Rh, расположены на полипептидах, а не на гликопротеинах.

О том, что гены RHнаходятся на хромосоме 1, свидетельствовал ряд фактов.

К началу 1970-х годов накопились данные о частичной сцепленности генов RHс генами наследственного эллиптоцитоза, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы (G-6-PD), пептидазы-С (РерС) и фосфоглюкомутазы (PGMj).

Результаты семейных исследований указывали на то, что перечисленные гены образуют взаимосвязанную группу близкорасположенных локусов и на­следуются вместе независимо от пола. Из накопленных сведений можно было сделать только один вывод: гены RHне расположены на хромосомах X и Y. Вопрос, на какой хромосоме они располагаются, оставался открытым.

Сдвиг в этой области достигнут благодаря гибридизации ядерных клеток мыши и человека (Ruddle и соавт. [587]). При культивировании гибридных клеток, име­ющих 2 набора хромосом (человека и мыши), человеческие хромосомы посте­пенно вытеснялись мышиными. Эта модель оказалась удобной для изучения про­дукции ферментов, в частности пептидазы С. Установлено, что утрата хромосо­мы 1 сопровождалась потерей способности культивируемых клеток продуцировать пептидазу-С, а поскольку гены РерС, G-6-PD, PGM}и RHсвязаны, было сделано заключение, что вся группа генов, в том числе ген RH, находится на хромосоме 1.

Дополнительные данные в поддержку этого заключения были получены Marsh и соавт. [462]. Авторы наблюдали больного миелофиброзом, у которого была кровяная химера: 7 % эритроцитов, циркулирующих в его кровотоке, были резус-положительными (CcDee), а остальные 93 % - резус-отрицательными (cde). Один из родителей больного имел фенотип CCDee, т. е. не содержал га-плотипа cde, который мог передать по наследству. Сам пациент передал гапло-тип CDeсвоему сыну. Авторы предположили, что эритроциты CcDee пациента происходили из ростка, в котором гаплотипы CDeи cdeбыли функциональны­ми, а эритроциты cde происходили из ростка, в котором гаплотип CDeявлялся молчащим {cde/ ). При хромосомном анализе выявлена делеция короткого плеча хромосомы 1 в 95 % ядерных клеток крови пациента, на основании чего авторы заключили, что потеря небольшого участка короткого плеча хромосо­мы 1, очевидно, привела к потере функционального гаплотипа CDe. Поскольку пациент был гетерозиготен по локусу PGM1и содержал оба типа этого фермен­та, авторы сделали вывод, что локус RHне только расположен на хромосоме 1, но и отстоит от центромеры хромосомы дальше, чем локус PGM.

В 1975 г. Turner и соавт. (цит. по Issitt и Anstee [374]) обследовали семью аме­риканских индейцев, в которой одни из членов были гомозиготны по гаплоти-пу -D-, другие - гетерозиготны, а третьи не имели этого гаплотипа. У гомози­гот была обнаружена делеция короткого плеча обеих хромосом 1, у гетерози-гот - делеция короткого плеча одной хромосомы, а у родственников, не имев­ших гаплотипа -D-, делеции не было.

Хромосомный анализ лиц Rhnull и -D- не выявил корреляций, подобных опи­санным выше. Хромосомные аберрации (делеции и транслокации) не во всех случаях можно выявить существующими цитологическими методами исследо­вания. Обнаружение корреляции серологических и кариологических признаков большая редкость. В литературе имеются сообщения о пациентах с кровяными химерами, содержащими 2 популяции эритроцитов, различающиеся по антиге­нам Rh. Однако эритроцитарные химеры, так же как и снижение экспрессии ан­тигенов в период обострения болезни, наблюдают редко, и их трудно связать с изменениями в хромосоме 1, которые чаще всего отсутствуют.

Лишь с появлением методов молекулярной биологии, гибридизации in situ кДНК было достоверно установлено Cherif-Zahar и соавт. [211] место располо­жения локуса RHна коротком плече хромосомы 1, а именно в районе 1р34.3-lp.36.13. Локусы групп крови Fy (Duffy), Sc (Scianna), Cr (DAF, Cromer), Kn(CR1, Knops) и Rd (Radin) также расположены на хромосоме 1.

Гаплотип одной хромосомы может влиять на экспрессию антигенов, коди­руемых гаплотипом другой хромосомы {транс). Наиболее выраженный эффект позиции транс прослеживается у лиц с генотипами Cde/cDeи Cde/CDe, при ко­торых ген С, находящийся в положении транс по отношению к гену D, приво­дит к продукции слабого D-антигена (см. раздел Фенотип Du), в то время как ген Dкодирует нормальную экспрессию D-антигена, когда в положении транс находится ген с [202, 204]. На рис. 4.4 представлены результаты исследования 2 семей, у членов которых этот эффект четко прослеживался.

У дяди и племянницы, имевших генотип Cde/cDe, экспрессия антигена D была снижена вдвое по сравнению с тремя другими членами семей, генотип ко­торых был CDe/cde(215, 219 и 444, 440,450 соответственно).

Влияние гаплотипа Cde на экспрессию антигена D

Влияние гаплотипа Cdeна экспрессию антигена D (по Ceppellini и соавт. [202]). Черные фигуры - нормальное количество D-антигена, заштрихованные -сниженное количество D-антигена, белые - отсутствие D-антигена. Цифры означают количество D-антигена в эритроцитах, выраженное в виде среднего титра 6 сывороток анти-D, титрованных с данными эритроцитами.

Race и Sanger [544], исследуя специально отобранные сыворотки анти-С и анти-Е, установили, что гены С и Е в позиции цис и транс влияют на экспрессию одноименных антигенов (табл. 4.9). Ген Е в позиции цис угнетает продукцию ан­тигена С, а ген С в позиции транс - продукцию антигена Е. Впоследствии авто­ры несколько изменили свои взгляды, придя к выводу, что эффект супрессии мо­жет быть обусловлен не взаимодействием генов, а наличием в указанных, заранее отобранных сыворотках примеси других антител. Некоторые сыворотки анти-С содержат фракцию анти-Се-антител, поэтому сильнее реагируют с эритроцита­ми лиц Cde/cdEи Cde/CDe, имеющими оба антигена (С и Се). Сыворотки анти-Е иногда содержат анти-СЕ-антитела, за счет чего сильнее реагируют с эритроцита­ми лиц CdE/cdeи CDE/cDe, несущими антигены Е и СЕ.

Однако для того чтобы полностью исключить взаимовлияние генов С и £ в разных генетических комбинациях, нет достаточных оснований. На других мо­делях эффект транс и цис в той или иной мере проявляется.

Таблица 4.9 Выраженность антигенов С и Е у лиц с различным генотипом RH

 

 

Генотип

Экспрессия антигена

С

Е

CdE/cde

Снижена

Повышена

Cde/cdE

Повышена

Снижена

CDE/cDe

Снижена

Повышена

Cde/cDE

Повышена

Снижена

Ген Dв положении транс оказывает подавляющее действие на синтез анти­генов С, Е и е (Race и Sanger [544]). У лиц CDe/cDEантиген С вырабатывается в меньшем количестве, чем у людей Cde/cde(Lawler и Race [412]).

Антигены f (се), V (ces), rh.(Ce), CE (Rh22), cE (Rh27) и Ces(Rh42) являются в соответствии с представлениями, существовавшими вплоть до последних лет, результатом г/мс-эффекта генов се, ces, Се, СЕ, сЕ и Се5. В положении транс гены сне, си es, С пене продуцируют антиген f и другие перечисленные выше антигены - ces, rh., СЕ, сЕ и Ces соответственно.

В свете современных представлений о системе Rh-Hr как двухгенной уро­вень экспрессии антигенов, объясняемый ранее положением цис и транс соот­ветствующих генов, получил новую интерпретацию. Антигены С, с, Е и е на по­липептиде Rh кодируются аллелями Се, сЕ, се и СЕ не только в разных сочета­ниях, но и в различном количестве, а также качестве того или иного антигена.

Имеются данные (Giles, Bevan [305], Heiken, Giles [342]) о существовании независимо наследуемых генов-супрессоров, Х°г и Xе, не связанных с локусом Rh, которые, однако, влияют на экспрессию антигенов резус, в частности ини­циируют появление слабовыраженных форм CDe-комплекса: (C)D(e), (c)D(e) и других, а также фенотипа Rhnull.

Задолго до установления молекулярных различий в структуре полипептидов Rh и кодирующих их генов иммуносеролога классифицировали мутации, даю­щие начало новым групповым признакам, по поведению тех или иных антиге­нов и антител в серологических реакциях.

Доссе [50] разделил мутации на 3 категории.

Мутации с полной автономностью. Примером такой мутации служили ан­тигены С и Cw в системе антигенов CCwc, гены которых до последних лет счи­тались аллельными (см. Cwи С*). Антиген Сw полностью автономен по отноше­нию к антигену С. Это проявляется в том, что люди СС, Сс и ее могут выраба­тывать антитела aHra-Cw. Некоторые сыворотки анти-С содержат комбиниро­ванные антитела aHra-C+Cw в несепарируемой форме и не могут быть разделе­ны на анти-С и анти-С w адсорбцией эритроцитами С и Cw. Вместе с тем чистые анти-С^антитела (без примеси анти-С) встречаются относительно часто.

Вначале предполагали, что антиген Cw наследуется независимо от С и с, проявляя полную автономность. Однако вскоре выяснилось, что он чаще при­сутствует в эритроцитах С+, чем в эритроцитах С-.

Аналогичными автономными свойствами обладает антиген Сх по отношению к антигенам С, с и Cw, а также антиген Ew по отношению к антигенам Е и е.

Мутации без автономности. Этот тип мутации отражается на количе­стве синтезируемого антигенного субстрата, не затрагивая его специфиче­ских свойств. Например, эритроциты Du агглютинируются не всеми сыворот­ками анти-D, которые в 100 % случаев реагируют с обычными эритроцитами D+. D не имеет собственной антигенной специфичности, отличающейся от D, однако передается по наследству кодоминантно, как D и все другие груп­повые антигены. Антитела анти-D могут быть полностью удалены из сыво­ротки адсорбцией эритроцитами Du, но сыворотка анти-D не может быть раз­делена на анти-D и анти-D11 дифференциальной адсорбцией. В совокупно­сти все эти признаки свидетельствуют о существовании генной мутации или модификации гена D, которая не является автономной и проявляется лишь в виде слабовыраженного антигенного вещества.

Можно привести и другие примеры мутаций без автономности: С и Си, Е и Еи.

Промежуточные мутации. Например, антиген cv, описанный Race и соавт. [549], имеет признаки двух антитетичных антигенов - С и с, представляя собой некую промежуточную форму этих антигенов. Эритроциты cv агглютинируются полными и неполными анти-с-антителами с такой же интенсивностью, как эри­троциты гомозигот с/с, а также реагируют с некоторыми сыворотками анти-С. Между тем специфические анти-су-антитела в чистом виде не встречаются.

Промежуточные формы антигенов наследуются кодоминантно.

Согласно современным представлениям о молекулярной структуре антиге­нов Rh (см. Строение системы Rh) приведенная классификация мутаций на основе иммуносерологических особенностей эритроцитов может показаться несколько наивной, однако именно такого рода сопоставления побудили моле­кулярных биологов искать объяснение групповым различиям на молекулярно-генетическом уровне.

Rh-антигены передаются индивиду по наследству в виде двух гаплотипов: одного - от отца, другого - от матери. Как и при наследовании других групповых признаков, у детей не может быть Rh-антигенов, отсутствующих у родителей.

Часто лекторы для закрепления знаний у слушателей спрашивают: «Могут ли родиться резус-положительные дети у резус-отрицательных родителей?» и получив, как правило, отрицательный ответ, продолжают вопрос: «А у резус-положительных родителей - резус-отрицательные дети?». На второй вопрос так­же нередко сдедует отрицательный ответ: «Не могут!». Это неверно. У резус-положительных родителей могут родиться резус-отрицательные дети, если оба родителя гетерозиготны - D/dх D/d.

Ниже приведена удобная для использования схема, позволяющая отразить возможные Rh-фенотипы детей, которые можно ожидать у конкретной супру­жеской пары (рис. 4.3).

Варианты наследования антигенов Rh

У супругов CDe/CDeх CDe/CDeвсе дети будут гомозиготы CDe/CDe. В се­мье, где один из родителей CDe/CDe, а другой - cde/cde, все дети будут гетерози-готы CDe/cde. Когда родители гетерозиготы CDe/cdeх CDe/cde, 75 % детей будут резус-положительными, 25 % - резус-отрицательными; из всех детей 25 % будут гомозиготы CDe/CDe, 50 % - гетерозиготы CDe/cdeи 25 % - гомозиготы cde/cde.

Используя такую схему, легко просчитать другие варианты фенотипа и генотипа детей или, наоборот, по фенотипу детей установить предполагаемый фенотип ро­дителей.

Если фенотип можно определить с помощью сывороток, то генотип, как пра­вило, устанавливают априори, исходя из частоты встречаемости того или иного фенотипа. В большинстве случаев данные совпадают. Например, генотип резус-отрицательного человека в 97,5 % случаев соответствует cde/cdeили cde/-; ге­нотип человека Cde почти в 100 % случаев Cde/cde, генотип человека CDe при­мерно в 30 % случаев CDe/cde, а в 16 % случаев - CDe/CDe. Высока (более 90 %) вероятность того, что человек с фенотипом cDe имеет генотип cDe/cde, a не cDe/cDe, поскольку гаплотип cdeвстречается значительно чаще, чем гапло-тип cDe. Более точно установить ЯЯ-генотип человека можно на основании се­мейного исследования, т. е. установления Rh-фенотипа родителей, братьев, се­стер и детей (близких родственников, желательно 3-4 поколений).

С высокой точностью генотип может быть установлен с помощью набо­ра сывороток анти-се, анти-Се, анти-сЕ и анти-СЕ. Например, человек с фено­типом CcDEe может иметь генотип cDE/Cdeили CDE/cde. При обоих геноти­пах эритроциты будут реагировать одинаково с сыворотками анти-D, анти-С, анти-Е, анти-с и анти-Е, а с сыворотками анти-се, анти-Се, анти-сЕ и анти-СЕ - по-разному. При генотипе cDE/Cdeагглютинация эритроцитов произой­дет с сыворотками анти-Се и анти-сЕ, но не произойдет с сыворотками анти-се и анти-СЕ (см. табл. 4.7). При генотипе CDE/cde, наоборот, эритроциты будут реагировать с сыворотками анти-се и анти-СЕ, но не будут реагировать с сыво­ротками анти-Се и анти-сЕ. Точно также эритроциты СсЕе с генотипом Cde/cdEбудут реагировать с сыворотками анти-Се и анти-сЕ, а у человека с генотипом CdE/cde- только с сыворотками анти-се и анти-СЕ.

Наиболее точно (но не в 100% случаев) генотип устанавливают, анали­зируя сам ген. Для этого исследуют ДНК человека с помощью молекулярно-биологических методов (см. ДНК-типирование Rh-антигенов).




Тесты для врачей

Наши партнеры